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    水貂、狐和貉常见细菌实时荧光PCR检测
    发布:老木一支笔 浏览量:1077  来源:河北排列3 进入: bbs
    关键词:细菌检测
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    河北排列3 www.labdz.com 1 范围
    本标准规定了水貂、狐和貉常见细菌(大肠杆菌、绿脓杆菌、克雷伯氏菌、嗜水气单胞菌、沙门氏菌、柠檬酸杆菌、不动杆菌)实时荧光PCR检测方法。
    本标准所适用于水貂、狐和貉的常见细菌的快速筛查和检测,其他动物细菌可参考本标准。
    2 规范性引用文件
    下列文件对于本文件的应用是必不可少的。凡是注日期的引用文件,仅所注日期的版本适用于本文件。凡是不注日期的引用文件,其最新版本(包括所有的修改单)适用于本文件。
    GB 19489  实验室生物安全通用要求
    GB/T 27401  实验室质量控制规范 动物检疫
    GB/T 6682  分析实验室用水规格和实验方法
    3 缩略语
    荧光定量PCR     荧光定量聚合酶链式反应。
    Ct值            每个反应管内的荧光信号量达到设定的阈值时所经历的循环圈数。
    DNA             脱氧核糖核酸。
    Taq酶           Taq DNA 聚合酶
    PBS             磷酸盐缓冲生理盐水
    4 试剂和材料
    4.1 荧光定量PCR检测仪及配套反应管(板)。
    4.2 高速台式冷冻离心机(离心速度12 000 r/min以上)。
    4.3 混匀器。
    4.4 恒温水浴锅。
    4.5 冰箱(2 ℃~8 ℃和-20 ℃两种)。
    4.6 微量移液器(0.5 L~10 L,5 L~20 L,20 L~200 L,200 L~1 000 L及配套吸头。
    4.7 1.5 mL 离心管(无核酸酶)。
    4.8 可以选用经验证效果好的细菌DNA柱式提取试剂盒,或按照附录A配制试剂。
    5 样品的采集与前处理
    采样过程中样本不得交叉污染,采样及样品前处理过程中须戴一次性手套。
    5.1 取样工具
    5.1.1 棉拭子、剪刀、镊子、研钵、Eppendorf管。
    5.1.2 所有上述取样工具必须经(121±2 )℃,15 min高压灭菌并烘干或经160 ℃干烤2 h。
    5.2 采样方法
    5.2.1 拭子样品
    咽喉拭子采样,采样时要将拭子深入喉头及上腭来回刮3 次~5 次,取咽喉分泌液。
    肛拭子采样,采样时要将拭子深入肛门回刮3 次~5 次,取排泄物。
    5.2.2 内脏或肌肉样品
    用无菌的剪刀和镊子剪取待检样品1.0 g于研钵中充分研磨,再加5.0 mL PBS混匀,然后将组织悬液转入无菌Eppendorf管中,编号备用。
    5.2.3 血清或血浆
    用无菌注射器直接吸取至无菌Eppendorf管中,编号备用。
    5.3 运送与存放
    采集的样品密封后,采用保温壶或保温桶加冰密封,尽快运送到实验室。
    采集或处理的样本在2 ℃~8 ℃条件下保存应不超过24 h;若需长期保存,须放置-70 ℃冰箱,但应避免反复冻融(最多冻融3 次)。
    6 引物及探针见表1“荧光PCR方法的引物及探针”。
    表1 荧光PCR方法的引物及探针
    大肠杆菌 F GTG TGA TAT CTA CCC GCT TCG C
     R AGA ACG GTT TGT GGT TAA TCA GGA
     Probe FAM-TCG GCA TCC GGT CAG TGG CAG T-MGB
    克雷伯氏菌 F TGAAACGACCTGATTGCATTCGAT
     R AGGCTGTCGGGATAAGCCA
     Probe HEX- CGCGCCACYGGAAGGGYATG-TAMRA
    绿脓杆菌 F ACC CGARACG YAG GCT ATG
     R CAG GTC GGA GCT GTM CTA CTC
     Probe FAM-AGGTGGTGATCGCACGCAG-BHQ
    沙门氏菌 F GCCATGCTGTTCGATGAT
     R GTTACCGATAGCGGGAAAGG
     Probe FAM-TTTTGCACCACMGCCAGCCC-TAMRA
    嗜水气单胞菌 F GCCGTCGAAACCAACGTAGA
     R CAACACCTGGTCCGGTATCG
     P FAM-CAGCAGAAACTTGCCACTCGGTCTTG-BHQ1
    不动杆菌 F GTTGTGGCTTTAGGTTTATTATACG
     R AAGTTACTCGACGCAATTCG

    表1 荧光PCR方法的引物及探针   (续)
    不动杆菌 Probe CY5-ACCCATCAAGGTAAAGGCTTCGTTCG-BHQ1
    柠檬酸杆菌 F TTGGCGTCCAGCGCATTCA
     R AATTCCAGCCTTCGGCAAACG
     Probe CY5-TCCAGATCGGAAAGGGTTGCGGTGAC-TAMRA
    7 操作方法
    7.1 样本核酸的提取
    7.1.1 细菌培养:取单克隆菌落接种于5ml液体培养基中,37 ℃摇床(300 rpm)培养过液。
    7.1.2 待检样品、阳性对照和阴性对照的份数总和用n表示,取n个灭菌的1.5 mL离心管,逐管编号。
    7.1.3 细菌收集:取1 ml培养物于1.5 ml EP管中,室温8000 rpm离心5 min,弃上清,沉淀重新悬浮于ddH2O中,弃上清。
    7.1.4 裂解:菌体沉淀加入6μl 50 mg/ml的溶菌酶,37 ℃作用2 h。再加5 mol/L NaCl 50μl,10%SDS 110μl,20 mg/ml的蛋白酶K 3μl,50 ℃作用3 h或37 ℃过夜(此时菌液应为透明粘稠液体)。
    7.1.5 抽提:菌液均分到两个1.5 ml EP管,加等体积的酚∶氯仿∶异戊醇(25∶24∶1),混匀,室温放置(5-10)min.12000 rpm离心10 min,抽提两次。(上清很粘稠,吸取时应小心)。
    7.1.6 沉淀:加0.6倍体积的异丙醇,混匀,室温放置10 min。12000 rpm离心10 min。
    7.1.7 洗涤:沉淀用75 %的乙醇洗涤。
    7.1.8 抽(晾)干后,溶于40μl~60μl ddH2O中,取2μl~5μl电泳.作PCR模板用.获得的DNA溶液,冰上保存备用(注意提取的DNA须在2 h内进行PCR 扩增,若需长期保存须放置-70 ℃以下冰箱,但应避免反复冻融)。
    7.2 扩增试剂准备---在反应混合物配制区进行
    可以用各细菌的检测试剂盒,也可合成引物探针后配制反应液。
    7.2.1 室温温浴PCR反应液,2000 r/min离心5 sec;
    7.2.2 准备n个洁净经无核酸酶的PCR反应管,设所需PCR管数为n(n = 样本数 + 1管阴性对照 + 1管阳性对照);
    7.2.3 每个测试反应体系需要15 μL PCR反应液和0.3 μL Taq酶。计算好各试剂的使用量,加入一适当体积离心管中,充分混合均匀,向每个PCR管中各分装15 μL,转移至样本处理区。
    7.3 加样---在样品处理区进行
    分别向上述PCR管中加入样本核酸提取步骤7.1.8中制备的DNA溶液各10μL,使总体积达25 μL。记录反应管对应的样品编号。盖紧管盖后,瞬时离心。
    7.4 荧光PCR反应---在检测区进行
    将加样后的PCR管放入荧光PCR检测仪内,记录PCR管摆放顺序。反应参数设置:
    a)  第一阶段,预变性92 ℃/3 min;
    b) 第二阶段,92 ℃ 15 sec,60 ℃ 60 sec,共40个循环,最后40 ℃ 2 min。荧光收集在第二阶段每次循环的退火延伸时进行。
    8 结果判定
    8.1 结果分析条件的设定 
    8.1.1 阈值设定原则:根据仪器噪声情况进行调整,以阈值线刚好超过阴性对照品扩增曲线的最高点为准。
    8.1.2 对于多通道荧光PCR仪,大肠杆菌、绿脓杆菌、沙门氏菌选定FAM(465-510)检测通道读取检测结果,ABI仪器选择FAM无荧光淬灭基团;克雷伯氏菌选定HEX或VIC检测通道读取检测结果,ABI仪器选择VIC无荧光淬灭基团;不动杆菌和柠檬酸菌选定CY5检测通道读取检测结果。
    8.2 质控标准
    8.2.1 阴性对照选用TE溶液做模板。阴性对照无Ct/Cp值并且无扩增曲线。
    8.2.2 阳性对照选用标准菌株提取核酸做模板。阳性对照的Ct/Cp值应小于等于28,并出现典型的扩增曲线。
    8.2.3 如阴性和阳性对照不满足以上条件,此次实验视为无效。
    8.3 结果判定
    8.3.1 阴性:无Ct/Cp值,且无特征性扩增曲线,表明样品为阴性。
    8.3.2 阳性:Ct/Cp值≤30.0,且出现典型的扩增曲线,表示样品为阳性。
    8.3.3 Ct/Cp值大于30.0,且出现典型的扩增曲线的样品建议复验。复验仍出现上述结果的,判为阳性,否则判为阴性。
    9 废弃物处理
    实验检测过程中产生的废弃物严格按照实验室生物安全管理的要求进行处理并做好记录。

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